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Cultivo, criopreservação e sincronização do ciclo celular de fibroblastos e produção in vitro de embriões como ferramentas para a conservação do preá-da-caatinga (Galea spixii Wagler, 1831)

dc.contributor.advisorPereira, Alexsandra Fernandes
dc.contributor.advisormailalexsandra.pereira@ufersa.edu.br
dc.contributor.authorAquino, Leonardo Vitorino Costa de
dc.contributor.referee1Martins, Daniele dos Santos
dc.contributor.referee2Domingues, Sheyla Farhayldes Souza
dc.contributor.referee3Freitas, Vicente José de Figueirêdo
dc.contributor.referee4Silva, José Roberto Viana
dc.coverage.spatialMossoró
dc.date.accessioned2026-02-23T15:28:15Z
dc.date.available2026-02-23T15:28:15Z
dc.date.issued2026-01-27
dc.description.abstractA conservação de espécies silvestres requer a integração de estratégias celulares e reprodutivas que ampliem a preservação do material genético e o avanço das biotecnologias aplicadas. Nesse contexto, os fibroblastos são utilizados em estudos de cultivo, criopreservação, e sincronização do ciclo visando aplicações em biotecnologia reprodutiva. Paralelamente, a maturação e ativação in vitro de oócitos constitui uma ferramenta essencial para espécies não convencionais, ainda carentes de protocolos padronizados. O preá-da-caatinga (Galea spixii), um roedor silvestre neotropical de interesse científico e conservacionista, apresenta lacunas metodológicas que justificam o desenvolvimento de abordagens integradas para sua conservação. Portanto, este estudo objetivou avaliar estratégias celulares e reprodutivas envolvendo a obtenção, criopreservação e sincronização do ciclo em G0/G1 de fibroblastos, bem como as condições de maturação e ativação de oócitos em G. spixii. Para tanto, a pesquisa foi conduzida em quatro etapas. Na primeira etapa, linhagens de fibroblastos foram avaliadas nas 2ª, 5ª, 8ª e 10ª passagem, bem como quanto à criotolerância após congelação lenta usando 10% DMSO e 0,2 M sacarose. Nesta etapa, observou-se que, embora células viáveis tenham sido identificadas até a 10ª passagem, fibroblastos na 5ª passagem apresentaram maior estabilidade morfológica, genética e fisiológica. Contudo, a criopreservação induziu alterações ultraestruturais e fisiológicas, evidenciando a necessidade de otimização dos protocolos. Na segunda etapa, objetivou-se otimizar a eficiência da criopreservação por meio da adição de L-prolina (LP), um aminoácido com ação osmoprotetora, em substituição parcial aos crioprotetores convencionais. Para tanto, fibroblastos foram criopreservados em quatro condições: Grupo A (Controle, não submetidos à criopreservação), Grupo B (10% DMSO e 0,2 M sacarose), Grupo C (10% DMSO e 5 mM LP) e Grupo D (10% DMSO, 0,2 M sacarose e 5 mM LP). A adição de LP (Grupos C e D) mostrou-se mais eficaz que o uso isolado de sacarose (Grupos A e B), resultando em maior viabilidade celular, menor dano fisiológico e redução de espécies reativas de oxigênio, com melhor atividade mitocondrial, evidenciando menor estresse celular. Na terceira etapa, fibroblastos foram submetidos à diferentes condições de sincronização do ciclo em G0/G1: roscovitina (RSV; 7,5; 10; e 15 μM por 6–24 h) ou privação de soro fetal bovino (PSFB; por 24–96 h). Embora 15 μM de RSV por 12 h tenha gerado 91,55% ± 1,20 das células em G0/G1, as concentrações 7,5 μM (89,87% ± 1,70; 96,17% ± 1,27) e 10 μM (90,01% ± 0,84; 92,22% ± 1,92) alcançaram melhor equilíbrio entre sincronização e apoptose em relação às células não submetidas a nenhum protocolo de sincronização (86,33% ± 0,73; 97,89% ± 0,34). A PSFB manteve 95,3% ± 0,7 de viabilidade após 24 h e 90,3% ± 1,1 das células em G0/G1, embora apresentasse perda de colônia, aderência e aumento de apoptose após 48 h. Na quarta etapa, oócitos foram avaliados quanto às condições do meio de maturação (primeiro experimento) e ativação artificial (segundo experimento). Nesse contexto, oócitos maturados na presença de 10 ng/mL EGF apresentaram maior viabilidade das células do cumulus e melhor qualidade morfométrica quando comparados àqueles expostos a 50 ng/mL. Adicionalmente, observaramse taxas de maturação nuclear entre 55% e 64%, com extrusão do primeiro corpúsculo polar, e de 50% a 63% de oócitos em metáfase II. Posteriormente, embora não tenham sido observadas diferenças nas taxas de mórulas, a ativação de oócitos com 10 mM SrCl₂ por 2,5 h, seguida da exposição a 5 μg/mL citocalasina B e 2 mM 6-DMAP por 3,5 h, resultou na maior taxa de clivagem (69,3% ± 5,0%) quando comparada à ativação realizada na ausência de 6-DMAP (53,5% ± 3,5). Por fim, fibroblastos foram isolados, criopreservados e sincronizados eficientemente, enquanto a produção in vitro de embriões apresentaram parâmetros favoráveis, reforçando o potencial da espécie como modelo biológico.
dc.description.abstract2The conservation of wild species requires the integration of cellular and reproductive strategies that enhance genetic material preservation and advance applied biotechnologies. In this context, fibroblasts are widely used in studies involving culture, cryopreservation, cell cycle synchronization, and aiming applications in reproductive biotechnology. In parallel, in vitro oocyte maturation and activation constitute essential tools for non-conventional species, which still lack standardized protocols. Galea spixii, a neotropical wild rodent of scientific and conservation interest, presents methodological gaps that justify the development of integrated approaches for its conservation. Therefore, this study aimed to evaluate cellular and reproductive strategies involving the establishment, cryopreservation, and G0/G1 cell cycle synchronization of fibroblasts, as well as oocyte maturation and activation conditions in Galea spixii. The research was conducted in four stages. In the first stage, fibroblast lines were evaluated at the 2nd, 5th, 8th, and 10th passages, as well as for cryotolerance after slow freezing using 10% DMSO and 0.2 M sucrose. Although viable cells were identified up to the 10th passage, fibroblasts at the 5th passage exhibited greater morphological, genetic, and physiological stability. However, cryopreservation induced ultrastructural and physiological alterations, highlighting the need for protocol optimization. In the second stage, the efficiency of cryopreservation was optimized through the addition of L-proline (LP), an amino acid with osmoprotective properties, as a partial substitute for conventional cryoprotectants. Fibroblasts were cryopreserved under four conditions: Group A (Control, non-cryopreserved), Group B (10% DMSO and 0.2 M sucrose), Group C (10% DMSO and 5 mM LP), and Group D (10% DMSO, 0.2 M sucrose and 5 mM LP). The addition of LP (Groups C and D) was more effective than sucrose alone (Groups A and B), resulting in higher cell viability, reduced physiological damage, lower reactive oxygen species levels, and improved mitochondrial activity, indicating reduced cellular stress. In the third stage, fibroblasts were subjected to different G0/G1 cell cycle synchronization conditions: roscovitine (RSV; 7.5, 10, and 15 μM for 6–24 h) or fetal bovine serum starvation (SFBS; for 24–96 h). Although 15 μM RSV for 12 h yielded 91.55% ± 1.20 of cells in G0/G1, the concentrations of 7.5 μM (89.87% ± 1.70; 96.17% ± 1.27) and 10 μM (90.01% ± 0.84; 92.22% ± 1.92) provided a better balance between synchronization efficiency and apoptosis compared to non-synchronized cells (86.33% ± 0.73; 97.89% ± 0.34). SFBS maintained 95.3% ± 0.7 viability after 24 h and 90.3% ± 1.1 of cells in G0/G1; however, colony loss, reduced adhesion, and increased apoptosis were observed after 48 h. In the fourth stage, oocytes were evaluated under different maturation medium conditions (first experiment) and artificial activation protocols (second experiment). Oocytes matured in the presence of 10 ng/mL EGF showed greater cumulus cell viability and improved morphometric quality compared to those exposed to 50 ng/mL EGF. Nuclear maturation rates ranged from 55% to 64%, with extrusion of the first polar body, and 50% to 63% of oocytes reached metaphase II. Subsequently, although no differences were observed in morula rates, oocyte activation using 10 mM SrCl₂ for 2.5 h followed by exposure to 5 μg/mL cytochalasin B and 2 mM 6-DMAP for 3.5 h resulted in the highest cleavage rate (69.3% ± 5.0) compared to activation in the absence of 6-DMAP (53.5% ± 3.5). Finally, fibroblasts were efficiently isolated, cryopreserved, and synchronized, while in vitro embryo production was carried out in an advanced manner, reinforcing the species' potential as a biological model.
dc.description.physical275 f.
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPES
dc.description.uriEdital No. 38/2021 Seleção de Discentes para Doutorado no Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal.
dc.format.mimetypepdf
dc.identifier.advisorLatteshttp://lattes.cnpq.br/8114638410593492
dc.identifier.advisorOrcidhttps://orcid.org/0000-0003-2137-854X
dc.identifier.authorLatteshttp://lattes.cnpq.br/7321630830100022
dc.identifier.authorOrcidhttps://orcid.org/0000-0001-7192-7581
dc.identifier.bibliographicCitationAQUINO, Leonardo Vitorino Costa de. Cultivo, criopreservação e sincronização do ciclo celular de fibroblastos e produção in vitro de embriões como ferramentas para a conservação do preá-da-caatinga (Galea spixii Wagler, 1831). 2026. 275 f. Tese (Doutorado em Ciência Animal) - Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, 2026.
dc.identifier.urihttps://repositorio.ufersa.edu.br/handle/prefix/15043
dc.language.isopt_BR
dc.publisher.centerCentro de Ciências Agrárias - CCA
dc.publisher.countryBrasil
dc.publisher.departmentDepartamento de Ciências Animais
dc.publisher.initialsUFERSA
dc.publisher.institutionUniversidade Federal Rural do Semi-Árido
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Ciência Animal
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.holderUFERSA
dc.rights.licenseAttribution-ShareAlike 3.0 Brazilen
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-sa/3.0/br/
dc.subject.cnpqCIENCIAS AGRARIAS::MEDICINA VETERINARIA
dc.subject.keywordRoedores neotropicais
dc.subject.keywordEstratégias de conservação
dc.subject.keywordBiotecnologia da reprodução
dc.subject.keywordCélulas somáticas
dc.subject.keywordOócitos
dc.subject.keywordNeotropical rodents
dc.subject.keywordConservation strategies
dc.subject.keywordReproductive biotechnologies
dc.subject.keywordSomatic cells
dc.subject.keywordOocytes
dc.titleCultivo, criopreservação e sincronização do ciclo celular de fibroblastos e produção in vitro de embriões como ferramentas para a conservação do preá-da-caatinga (Galea spixii Wagler, 1831)
dc.title.alternativeCulture, cryopreservation and cell cycle synchronization of fibroblasts and in vitro embryo production as tools for the conservation of the Spix's yellow-toothed cavy (Galea spixii Wagler, 1831)
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/doctoralThesis

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